運輸和保存：可選擇干冰運輸及發(fā)送復蘇存活細胞方式：

（1）干冰運輸，收到后 立即轉(zhuǎn)入液氮或者-80 度冰箱凍存或直接復蘇；

（2）存活細胞，收到后應(yīng)繼續(xù)生 長，傳代達到細胞生長狀態(tài)良好時，再進行凍存。具體操作見細胞培養(yǎng)步驟。 收到細胞后請拍照，3 天內(nèi)如果發(fā)現(xiàn)污染，請及時拍照與我們聯(lián)系。 

 

細胞接收后的處理：

1） 收到細胞后，請檢查發(fā)貨培養(yǎng)瓶的狀況，若發(fā)現(xiàn)培養(yǎng)瓶破損、有液溢出及細 胞有污染，請拍照后及時聯(lián)系我們。 

2） 在顯微鏡下確認細胞生長狀態(tài)時，最好在低倍鏡（4 或 5X 物鏡)下進行，能 準確判斷細胞的傳代密度?？醇毎男螒B(tài)請在 10X 和 20×物鏡下，同時給剛收 到的細胞拍照，（10×，20×）各 2-3 張以及培養(yǎng)瓶外觀照片一張留存，作為細 胞需要售后時提供收到細胞時細胞狀態(tài)的依據(jù)。

3） 觀察好細胞狀態(tài)后，75%酒精消毒瓶壁將T25瓶置于37℃培養(yǎng)箱放置約2-3h。

4） 貼壁細胞：在運輸過程中貼壁細胞會有脫落的現(xiàn)象，如發(fā)現(xiàn)貼壁細胞有脫落 或者脫落后抱團生長，可將 T25 瓶置于 37℃培養(yǎng)箱放置約 2-3h，然后抽出瓶中 的培養(yǎng)基和未貼壁細胞 1000rpm 離心 5 分鐘，棄去上清重懸后接種到加有按照 說明書細胞培養(yǎng)條件新配制的完全培養(yǎng)基的原培養(yǎng)瓶中（或新的培養(yǎng)瓶中）。

5） 懸浮細胞：T25 瓶置于 37℃培養(yǎng)箱放置約 2-3h，然后抽出瓶中的培養(yǎng)基和 細胞 1000rpm 離心 5 分鐘，棄去上清重懸后接種到新的培養(yǎng)瓶中（加入按照說 明書細胞培養(yǎng)條件新配制的完全培養(yǎng)基）。 

6）備注：運輸用的培養(yǎng)基（灌液培養(yǎng)基）不能再用來培養(yǎng)細胞，請換用按照說 明書細胞培養(yǎng)條件新配制的完全培養(yǎng)基來培養(yǎng)細胞。  收到細胞后第一次傳代建 議 1：2 傳代 。 

細胞用途：僅供科研使用。 

                        

本公司的細胞培養(yǎng)操作規(guī)程，供參考

一．培養(yǎng)基及培養(yǎng)凍存條件準備：

1） 準備 IMEM 培養(yǎng)基；優(yōu)質(zhì)胎牛血清，２０%；雙抗，１％。

2） 培養(yǎng)條件： 氣相：空氣，95%；二氧化碳，5%。 溫度：37℃，培養(yǎng)箱濕度 為 70%-80%。

3） 凍存液：90%血清，10%DMSO，現(xiàn)用現(xiàn)配。

二． 細胞處理：

1） 復蘇細胞：將含有 1mL 細胞懸液的凍存管迅速放入 37℃水浴中（水面要低 于凍存管蓋部）搖晃解凍，移入事先準備好的含有 4mL培養(yǎng)基的 15ml 離心管中混合均勻。在 1000RPM 條件下離心 4 分鐘，棄去上清液，加入 1mL培 養(yǎng)基后吹勻。然后將所有細胞懸液移入含有 5ml 培養(yǎng)基的培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)過夜。 第二天換液并檢查細胞密度。

2） 細胞傳代：如果細胞密度達 80%-90%，即可進行傳代培養(yǎng)。 注：第一次傳代推薦傳代比例為 1:2，以后傳代比例可根據(jù)客戶需要自己決定。

3）細胞凍存：待細胞生長狀態(tài)良好時，可進行細胞凍存。 1，細胞凍存時，取上清，可使用血球計數(shù)板計數(shù)。2，4min ，1000rpm 離心去掉上清。加 1ml 血清重懸細胞，根據(jù)細胞數(shù)量 加入血清和 DMSO，輕輕混勻，DMSO 終濃度為 10%，細胞密度 1-2xE6/ml，每支 凍存管凍存 1ml 細胞懸液，注意凍存管做好標識。 3，將凍存管置于程序降溫盒中，放入-80 度冰箱，至少 2 個小時以后轉(zhuǎn)入液 氮灌儲存。記錄凍存管位置以便下次拿取。 

 

注意事項：  1. 收到細胞后，若發(fā)現(xiàn)干冰已揮發(fā)干凈、凍存管瓶蓋脫落、破損及細胞有污染， 請立即與我們聯(lián)系。 2. 所有動物細胞均視為有潛在的生物危害性，必須在二級生物安全臺內(nèi)操作， 并請注意防護，所有廢液及接觸過此細胞的器皿需要滅菌后方能丟棄。